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日期:2025-09-19

 

 

 

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  WB-转膜‌是Western Blot(WB)实验中的一个关键步骤,其目的是将凝胶电泳分离后的蛋白质从凝胶转移到固相载体(如PVDF膜或硝酸纤维素膜)上,以便进行后续的抗体孵育和显色检测。




转膜的作用与原理




  转膜是通过电场驱动,将凝胶中的蛋白质从凝胶迁移至固相载体上。这一过程确保了蛋白质的稳定性和免疫原性,使得抗体能够准确识别并检测目标蛋白。常用的固相载体包括 PVDF膜 和 硝酸纤维素膜 (NC膜)。PVDF膜因其强大的蛋白结合能力和低荧光背景,成为WB实验中最常用的转印膜‌。

 


转膜的方法分类



转膜方法主要包括湿转法和半干转法:

湿转法‌:适用于大多数蛋白质,尤其是高分子量蛋白(>100 kDa),转膜时间长(60-90分钟),需在低温环境下进行‌。

半干转法‌:适用于低分子量蛋白(<50 kDa),转膜速度快(15-30分钟),但对缓冲液和电流要求严格,容易发热,需控制温度‌。



 


转膜的具体操作步骤




以湿转法为例,具体操作步骤包括:


准备转膜装置‌:将转膜夹、海绵垫、滤纸、膜浸泡在含甲醇的转膜缓冲液中10分钟(PVDF膜需用甲醇预激活30秒)‌。

组装转膜“三明治”‌:按顺序叠放阴极板海绵垫、滤纸、凝胶、PVDF膜、滤纸、海绵垫、阳极板,用玻璃棒轻轻滚动排除气泡‌。

设置转膜参数‌:通常使用恒流模式,电流为200-300 mA,时间1-2小时,高分子量蛋白可延长转膜时间或降低电流‌。

转膜后处理‌:取出膜后用丽春红染色确认转膜效果,再用TBST洗去染料‌。








转膜过程中常见问题及解决方案





转膜后无信号‌:可能原因包括电流/时间不足、膜未激活、方向装反。对策是检查转膜装置方向,确保PVDF膜充分激活‌。

背景高或非特异性条带‌:可能原因包括膜未封闭完全、抗体浓度过高。对策是延长封闭时间(推荐5%脱脂奶粉封闭1小时),优化抗体稀释比例‌。

高分子量蛋白转膜困难‌:对策是改用0.45 μm厚的PVDF膜,延长转膜时间至2小时以上‌。



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