产品介绍
己糖激酶(HK,EC2.7.1.1)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,是葡萄糖分解过程中的第一个关键酶,催化葡萄糖转化为6-磷酸葡萄糖,6-磷酸葡萄糖是糖酵解和磷酸戊糖途径的交叉点。
检测原理:HK催化葡萄糖合成6-磷酸葡萄糖,6-磷酸葡萄糖脱氢酶进一步催化6-磷酸葡萄糖 脱氢生成NADH,生成的NADH将WST-8还原生成橙黄色的formazan(甲臜),在450nm左右检测有最大吸收峰。通过检测450nm处光吸收增加速率即可计算出样本中HK活性。
检测范围:31.25-2000 μM
灵敏度:31.25 μM
适用样本:动植物组织、细胞、细胞上清、细菌、血清(浆)
自备仪器和试剂
| 自备资源类型 |
资源名称 |
备注 |
| 仪器 |
酶标仪 |
能测450nm处的吸光度 |
| 耗材 |
96孔酶标板 |
普通透明板 |
| 试剂 |
PBS/去离子水 |
清洗样本用/配制标准品用 |
| 其他 |
匀浆器(组织样本)、恒温箱、冰盒、低温离心机、可调节式移液枪及枪头 |
检测量较大时合理使用多通道移液器有助于提高实验效率 |
实验流程
1、试剂准备
| 试剂名称 |
试剂准备 |
注意事项 |
| Extraction Buffer |
即用型;使用前平衡到室温 |
4℃保存 |
| Assay Buffer |
即用型;使用前平衡到室温 |
4℃保存 |
| Substrate Mix |
临用前配制;
48T加入15.2mL Assay Buffer溶解,
96T加入30.4mL Assay Buffer 溶解 |
未用完的已溶解的Substrate Mix可4℃保存一周。
若需更长时间保存,请分装后-20℃避光保存1个月,避免反复冻融。 |
| Enzyme Mix |
即用型;使用前平衡到室温 |
实验过程中避光放置;
-20℃避光保存 |
| WST-8 |
即用型;使用前平衡到室温 |
实验过程中避光放置;
-20℃避光保存 |
| Enhancer |
即用型;使用前平衡到室温 |
实验过程中避光放置;
-20℃避光保存 |
| NADH Standard |
临用前配制;
用1mL去离子水充分溶解 |
浓度为2000μM;
未用完的已溶解的NADH Standard可4℃保存一周。
若需更长时间保存,请分装后-20℃避光保存1个月,避免反复冻融。 |
2、标准品配制
使用去离子水将浓度为2000μM的标准品稀释为1000μM、500μM、250μM、125μM、62.5μM、31.25μM的标准溶液。每次实验都要做一次标准品检测,制作标曲;稀释后的标准品溶液不稳定,必须在4小时内使用。
| 标准品工作液 |
标准品 (μL) |
去离子水 (μL) |
浓度 (μM) |
| Std.1 |
200µL of 2000μM |
0 |
2000 |
| Std.2 |
100µL of 2000μM |
100 |
1000 |
| Std.3 |
100µL of 1000μM |
100 |
500 |
| Std.4 |
100µL of 500μM |
100 |
250 |
| Std.5 |
100µL of 250μM |
100 |
125 |
| Std.6 |
100µL of 125μM |
100 |
62.5 |
| Std.7 |
100µL of 62.5μM |
100 |
31.25 |
| 空白 |
0 |
100 |
0 |
3、样本制备
注意:推荐使用新鲜样本,如果不立即进行实验,样本可在-80℃保存1个月。对于脂肪含量较高的动物组织,离心后移除上层脂肪,再取上清液。
3.1 动物组织样本:
称取约0.1g样本,加入1mL Extraction Buffer,冰浴匀浆,8000g,4℃离心10min,取上清液置冰上待测。
3.2 植物组织样本:
称取约0.1g样本,加入1mL Extraction Buffer捣碎,冰浴超声破碎5min(功率20%,超声3s,间隔7s,重复30次),8000g,4℃离心10min,取上清液置冰上待测。
3.3 细胞(菌):
收集5×10⁶个细胞或细菌到离心管内,用预冷的PBS清洗,离心后弃上清。加入1mL Extraction Buffer,冰浴超声破碎5min(功率20%,超声3s,间隔7s,重复30次),然后8000g,4℃离心10min,取上清液置冰上待测。
3.4 细胞上清或血清(浆):
直接检测。
4、实验步骤
4.1 酶标仪准备:预热30min以上,调节波长到450nm。
4.2 测定工作液的配制:
测定孔每孔配制190µL测定工作液:吸取183µL Substrate Mix,1µL Enzyme Mix,5µL WST-8,1µL Enhancer。测定工作液需现配现用。
4.3 对照工作液的配制:
对照孔每孔配制190µL对照工作液:吸取184µL Substrate Mix,5µL WST-8,1µL Enhancer。对照工作液需现配现用。
4.4 检测体系配制:
空白孔在96孔板中依次加入10μL去离子水和190μL测定工作液;
标准孔在96孔板中依次加入10μL不同浓度的标准品和190μL测定工作液;
测定孔在96孔板中依次加入10μL样本和190μL测定工作液;
对照孔在96孔板中依次加入10μL样本和190μL对照工作液。
注意:每个样本设置一个对照孔,消除样本本身颜色的干扰。
4.5 反应体系充分混匀后,室温孵育5min。
4.6 吸光度检测:在450nm处读取吸光度值,分别标记为A 空白 、A 标准 、A 测定 和A 对照 。
5、结果计算 以下为您提供的推导过程计算公式和简洁计算公式,两者完全相等。
5.1 数据处理 计算ΔA 标准 =A 标准 -A 空白 ,ΔA 测定 =A 测定 -A 对照 。
5.2 标准曲线的绘制 以标准液浓度为y轴,ΔA 标准 为x轴,绘制标准曲线。将ΔA 测定 带入方程得到y值 (1µM=1nmol/mL) 即NADH含量。
5.3 样本HK活性计算
(1) 按样本质量计算
单位的定义:每g组织每分钟生成1nmol的NADH定义为一个酶活力单位。
HK (U/g 鲜重)=y×V 标准 ÷V 样 ×V 提取 ÷W÷T=0.2×y÷W
(2) 按细胞或细菌数量计算
单位的定义:每10⁴个细胞或细菌每分钟生成1nmol的NADH定义为一个酶活力单位。
HK (U/10⁴)=y×V 标准 ÷V 样 ×V 提取 ÷500÷T=0.0004×y
(3) 按液体体积计算
单位的定义:每毫升液体每分钟生成1nmol的NADH定义为一个酶活力单位。
HK (U/mL)=y×V 标准 ÷V 样 ÷T=0.2×y
(4) 按蛋白浓度数量计算
单位的定义:每mg蛋白每分钟生成1nmol的NADH定义为一个酶活力单位。
HK (U/mg prot)=y×V 标准 ÷V 样 ÷Cpr÷T=0.2×y÷Cpr
参数说明
1 μM=1 nmol/mL;
V 标准 :加入标准品体积,0.01mL;
V 样 :加入样本体积,0.01mL;
V 提取 :加入Extraction Buffer 体积,1mL;
W:样本质量,g;
T:反应时间,5min;
Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;
500:细胞或细菌数量,5×10⁶,以10⁴为单位。
6、结果展示
典型标准曲线:y=1304.2x+5.7163,R²=0.9999

示例:取0.1g小鼠肌肉组织,按照测定步骤操作,用96孔板进行检测。测得:ΔA 测定 =A 测定 -A 对照 =0.562-0.065=0.497。将ΔA 测定 代入标准曲线方程,得到y=653.9037。按样本质量计算得:HK (U/g鲜重)=y×V 标准 ÷V 样 ×V 提取 ÷W÷T=0.2×y÷W=1307.81 U/g。
注意事项
1、正式检测前,建议选择2-3个预期差异较大的样本进行预实验。
2、本试剂盒兼容分光光度计检测,请按照分光光度计检测要求按比例调节检测试剂配制量。
3、对于组织样本及细胞样本等,可通过测定蛋白浓度来进行样本间结果均一化。推荐使用阿拉丁B665595 BCA蛋白定量试剂盒或R1491648 即用型BCA蛋白定量试剂盒。
4、建议实验者自行建立标准曲线以提高结果准确度。如未自行建立标准曲线,可参考结果展示部分的典型标准曲线公式进行结果计算。
5、生化检测试剂普遍具有刺激性、生物毒性等,为了您的安全和健康,请在实验全程做好生物安全防护,穿戴实验服、口罩、手套、头套等安全护具,在通风橱、生物安全柜中进行实验。
6、本产品仅供科学研究使用,不适用于临床诊断。
常见问题及解答
Q:检测得到的样本ΔA 测定 过高或者过低怎么办?
A:如果样本的ΔA 测定 >1.5,则说明样本HK活性太高,需用Extraction Buffer适当稀释,再重新进行测定。如果样本的ΔA 测定 <0.001,可提高样本量,再重新进行测定。