Flag标签蛋白免疫沉淀试剂盒(纳米抗体磁珠法)

产品介绍

背景介绍：UltraBio™ Anti-Flag Magnetic Beads，即Anti-Flag磁珠，也称Anti- DYKDDDDK Magnetic Beads、Anti-Flag免疫磁珠或Flag抗体磁珠， Flag纳米抗体磁珠偶联了经过严格筛选、优化并重组表达的无轻、重链的Flag纳米抗体可用于捕获哺乳动物、植物、细菌、酵母、昆虫等多种生物细胞、组织提取物中的Flag标签（ DYKDDDDK ）融合蛋白及其相互作用蛋白。本试剂盒包含高质量的Anti-Flag磁珠及经过优化验证的免疫沉淀必要试剂，使免疫沉淀(Immunoprecipitation, IP)或免疫共沉淀(Co-IP)实验更加简单、便捷、高效，广泛用于带有Flag标的融合蛋白或其蛋白复合物的免疫沉淀、免疫共沉淀或纯化等实验。 His标签(His-tag)、Myc标签(Myc-tag)、Flag标签(Flag-tag)、HA标签(HA-tag)、V5标签(V5-tag)和GST标签(GST-tag)等是表达载体上最常见的一些标签，通过与这些标签的融合表达可以非常方便地检测目的蛋白及与目的蛋白相互结合的蛋白，也可以非常方便地用于目的蛋白的纯化。
注意事项：1.本试剂盒内包含的IP裂解液已包含蛋白酶抑制剂，如果有特殊需求，可考虑选择其它适当的抑制剂混合物。2.所有的样品裂解步骤宜在冰浴或4ºC操作，以尽量减少蛋白降解的可能性。若细胞裂解不够完全可在使用裂解液之后使用超声裂解细胞。3.本试剂盒提供的IP裂解液经反复测试，适合很多情况下的免疫沉淀时的样品裂解和后续的洗涤。但由于免疫沉淀蛋白样品的复杂性和特殊性，本裂解液不一定适合所有免疫沉淀样品的裂解与洗涤。在使用本试剂盒提供的裂解液和洗脱效果欠佳的情况下，需要自行对于裂解液和洗涤液进行摸索和调整。4.Magnetic Beads使用前一定要充分重悬，即充分颠倒若干次使混合均匀。5.蛋白样品收集后宜尽快完成纯化工作，并应始终放置在4ºC或冰浴，以减缓蛋白降解或变性。6.本试剂盒提供的裂解液不仅用于样品裂解，也用于后续的洗涤步骤.使用说明：1. 样本处理：(注意：样品裂解需在4ºC或冰上操作) 对于血清样本的准备：若目标蛋白丰度较高，建议用裂解液稀释血清样本至目标蛋白终浓度为 50~150 µg/mL，置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)；对于贴壁细胞的裂解和准备：吸除培养液，用PBS洗涤2次，然后吸净残留的液体。按照每50-100万细胞(相当于6孔板的一个孔)加入100-200μl的含抑制剂裂解液，适当吹打，使裂解液和细胞充分接触。通常裂解液接触动物细胞1-2秒后，细胞就会被裂解。植物细胞宜在冰上裂解2-10min。充分裂解后，用细胞刮刀刮落细胞，收集至 1.5 mL 离心管内10,000-14,000×g在4ºC离心3-5分钟，取上清，进行蛋白浓度测定后即可进行后续的免疫沉淀或免疫共沉淀等。注：裂解后会出现少量不溶性物质，主要为基因组DNA等，离心后会产生沉淀物。对于悬浮细胞的裂解和准备：250-1000×g室温离心5min收集细胞。用PBS洗涤2次，然后吸净残留的液体。轻轻vortex或者弹击管底以把细胞尽量分散开。按照每50-100万细胞加入100-200μl的比例加入含抑制剂裂解液。混匀后置于冰上孵育5~20 min(期间混匀几次)，轻弹管底或适当吹打，以充分裂解细胞。充分裂解后应没有明显的细胞沉淀。如果细胞量较多，建议分装成50-100万细胞/管，然后再裂解。大团的细胞较难裂解充分，而少量的细胞由于裂解液容易和细胞充分接触，相对比较容易裂解充分。充分裂解后，10,000-14,000×g在4ºC离心3-5分钟，取上清，进行蛋白浓度测定后即可进行后续的免疫沉淀和免疫共沉淀等。注：裂解后会出现少量不溶性物质，主要为基因组DNA等，离心后会产生沉淀物。 对于细菌或酵母样品的裂解和准备：对于1ml菌液或酵母液，离心去上清，用PBS洗涤2次，然后吸净残留的液体。轻轻vortex或者弹击管底以把细菌或酵母尽量分散开。加入100-200μl含抑制剂裂解液，轻轻vortex或者弹击管底以混匀，冰上裂解2-10min。如果希望获得更好的裂解效果，细菌和酵母可以分别使用溶菌酶(lysozyme)和破壁酶(lyticase)消化，然后再使用含抑制剂裂解液进行裂解。充分裂解后，10,000-14,000×g在4ºC离心3-5分钟，取上清，进行蛋白浓度测定后即可进行后续的免疫沉淀和免疫共沉淀等。注：裂解后很可能会出现少量不溶性物质，主要为基因组DNA等，离心后会产生沉淀物。对于组织样品的裂解和准备：把组织剪切成细小的碎片，按照每20mg组织加入约100-200μL裂解液的比例加入裂解液，然后用玻璃匀浆器或其它匀浆设备进行匀浆。充分匀浆可以确保组织被完全裂解。裂解后4ºC 12000g离心5分钟，取上清，进行蛋白浓度测定后即可进行后续的免疫沉淀和免疫共沉淀等。注：裂解后很可能会出现少量不溶性物质，主要为基因组DNA等，离心后会产生沉淀物。2. Anti-Flag Magnetic Beads预处理：a. 轻轻重悬Anti-Flag Magnetic Beads，尽量形成均匀的悬浊液，取20μl悬浊液至一洁净离心管中加入预冷的1X TBS至最终体积为约0.5mL-1mL。b.置于磁力架上分离1min。小心去除上清，不要吸到磁珠。重复上述步骤两次 。3. 样品的结合：a. 将细胞裂解液与预处理过的Anti-Flag Magnetic Beads在离心管中混合。每个IP反应总蛋白建议量是500 – 1000 μg，可使用BCA蛋白定量试剂盒测定。b. 置于翻转混合仪上4℃孵育4-6 h或者过夜（也可选择常温1-2h）。c. 将上述混合液置于磁力架上静置1min，然后把上清液转移到新的离心管中备用(上清液可用于检测DYKDDDDK标签蛋白是否存在残留)，原离心管中剩余的即为蛋白-磁珠复合物。d. 向所得的蛋白-磁珠复合物中加入1mL 1XTBS缓冲液，用移液器轻柔吹打重悬，接着在磁力架上静置1min后，吸弃上清，重复上述步骤两次 。4. 洗脱： 本试剂盒提供以下两种洗脱方案，操作者可根据后期检测的需要选择不同的洗脱方法。。变性洗脱适用于 Western blot 分析。非变性洗脱被中和后，适用于酶法或功能测定。a.变性洗脱：此方法洗脱的样品适用于SDS-PAGE检测。向洗涤后的含抗原-抗体-复合物的Anti-Flag Magnetic Beads中加入20 µL 1XSDS-PAGE 上样缓冲液（可用5X上样缓冲液进行稀释）混合均匀，100℃加热10 min。待冷却后，置于磁力架上分离1min。收集上清，进行SDS-PAGE检测。b.非变 性 洗 脱：此方法洗脱的样品保持原有的生物活性，可用于后期功能分析。向洗涤后的含抗原-抗体-复合物的Anti-Flag Magnetic Beads中加入50 µL 洗脱缓冲液 ，混匀后置于旋转混合仪上，室温孵育5分钟，孵育完毕后，置于磁力架上分离1min，将上清转移到新的离心管中，并立刻加入5μL Neutralization Buffer ，适当混匀，将洗脱产物pH调节至中性，用于后期功能分析。注：a.为了获得最大的洗脱效率，可重复该洗脱步骤若干次，并将相同样品合并。b.洗脱并中和的蛋白及其复合物置于4ºC待用或者-20ºC或-80ºC长期保存。c.酸性洗脱法虽然高效，但仍可能低于变性洗脱法。d.由于目的蛋白的差异可能对酸性洗脱法的洗脱效率有一定的影响，如果对洗脱效率的要求比较高，可对洗脱液的pH进行一定的调整，相应的中和液的pH值或量也要进行一定的调整，具体需要自行优化相关实验条件。也可以考虑采用效率可能更高的多肽竞争洗脱法或效率预期最高的变性洗脱法，后者的缺点是在变性条件下进行洗脱，可能会对后续对于蛋白活性有要求的实验产生影响。