免疫沉淀试剂盒(Protein G磁珠法)

产品介绍

阿拉丁Immunoprecipitation Kit (Protein G Magnetic Beads) 是为免疫（共）沉淀（IP）实验提供的经典磁珠法解决方案。 该技术利用特异性抗体识别并结合溶液中的目标蛋白（抗原），进而通过能高效结合抗体的介质，如本试剂盒提供的高质量Protein G琼脂糖磁珠，形成不溶性抗原-抗体-磁珠复合物。经离心分离，即可从复杂的样品混合物（如细胞裂解液）中特异性捕获并纯化出目的蛋白。 基于此原理，本试剂盒的沉淀产物适用于后续对目的蛋白或其相互作用的复合物组分进行多种分析，是Western Blot（蛋白免疫印迹）验证、质谱分析等下游检测技术的理想前处理工具。试剂盒提供的核心成分为经过优化的重组Protein G琼脂糖磁珠及必要的配套试剂，确保了实验过程的便捷、稳定与高效。 本试剂盒中的Protein G Magnetic Beads (即 Protein G琼脂糖磁珠)可以特异性地结合相关抗体，并可以借助磁力架非常便捷地应用于目的蛋白或其蛋白复合物的免疫沉淀或纯化等实验。其特点有：(1)特异性强、靶蛋白结合量高。本试剂盒提供的Protein G Magnetic Beads为10%的琼脂糖磁珠沉淀，每毫升Protein G Magnetic Beads (沉淀物)可结合超过30-40mg human IgG，且特异性强，非特异性杂蛋白结合少。(2)可重复使用多次，性价比高。在正常情况下，本产品用于相同抗体的纯化时可回收使用3-5次。如果用于免疫共沉淀检测蛋白与蛋白的相互作用，不推荐重复使用。产品组分表I1506975Component20 T100 TStorage conditionsQuantity Per TestI1506975AIP 裂解液50 mL250 mL2-8°C200μLI1506975BTBS缓冲液(10×)10 mL30 mL2-8°C50μLI1506975CIP Protein G琼脂糖磁珠0.4mL2mL2-8°C20μL per 500~1000μg 裂解液I1506975D正常小鼠IgG10 μl50 μl-20°C按需I1506975E正常兔IgG10 μl50 μl-20°C按需I1506975FIP 洗脱缓冲液2 mL10 mL2-8°C50μLI1506975GIP 中和缓冲液0.2 mL1 mL2-8°C5μLI1506975HSDS上样缓冲液(5×)0.4 mL2 mL-20°C20μL
注意事项：1. 本试剂盒内包含的IP裂解液已包含蛋白酶抑制剂，如果有特殊需求，可考虑选择其它适当的抑制剂混合物。2. 所有的样品裂解步骤宜在冰浴或4ºC操作，以尽量减少蛋白降解的可能性。若细胞裂解不够完全可在使用裂解液之后使用超声裂解细胞。3. 本试剂盒提供的IP裂解液经反复测试，适合很多情况下的免疫沉淀时的样品裂解和后续的洗涤。但由于免疫沉淀蛋白样品的复杂性和特殊性，本裂解液不一定适合所有免疫沉淀样品的裂解与洗涤。在使用本试剂盒提供的裂解液和洗脱效果欠佳的情况下，需要自行对于裂解液和洗涤液进行摸索和调整。4. Magnetic Beads使用前一定要充分重悬，即充分颠倒若干次使混合均匀。5. 蛋白样品收集后宜尽快完成纯化工作，并应始终放置在4ºC或冰浴，以减缓蛋白降解或变性。6. 使用此试剂盒时抗体将与免疫沉淀的抗原一起被洗脱。因此，在还原型 SDS-PAGE 凝胶或 Western blot 时至少产生三个蛋白条带：抗体重链（ 50 kDa）、轻链（ 25 kDa ）和抗原。如果抗体条带掩盖了免疫沉淀的抗原，则可用与免疫沉淀中不同种属的抗体做 Western blot 检测(如, 免疫沉淀用鼠抗的 IgG 而检测用兔抗的IgG)。 或者可以购买阿拉丁的构象特异性二抗（rp303272），可以直接避免抗体轻重链对于IP实验的干扰。7. 本试剂盒提供的裂解液不仅用于样品裂解，也用于后续的洗涤步骤。使用说明：1. 样本处理：(注意：样品裂解需在4ºC或冰上操作) 对于血清样本的准备：若目标蛋白丰度较高，建议用裂解液稀释血清样本至目标蛋白终浓度为 50~150 µg/mL，置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)；对于贴壁细胞的裂解和准备：吸除培养液，用PBS洗涤2次，然后吸净残留的液体。按照每50-100万细胞(相当于6孔板的一个孔)加入100-200μl的含抑制剂裂解液，适当吹打，使裂解液和细胞充分接触。通常裂解液接触动物细胞1-2秒后，细胞就会被裂解。植物细胞宜在冰上裂解2-10min。充分裂解后，用细胞刮刀刮落细胞，收集至 1.5 mL 离心管内10,000-14,000×g在4ºC离心3-5分钟，取上清，进行蛋白浓度测定后即可进行后续的免疫沉淀或免疫共沉淀等。注：裂解后会出现少量不溶性物质，主要为基因组DNA等，离心后会产生沉淀物。对于悬浮细胞的裂解和准备：250-1000×g室温离心5min收集细胞。用PBS洗涤2次，然后吸净残留的液体。轻轻vortex或者弹击管底以把细胞尽量分散开。按照每50-100万细胞加入100-200μl的比例加入含抑制剂裂解液。混匀后置于冰上孵育5~20 min(期间混匀几次)，轻弹管底或适当吹打，以充分裂解细胞。充分裂解后应没有明显的细胞沉淀。如果细胞量较多，建议分装成50-100万细胞/管，然后再裂解。大团的细胞较难裂解充分，而少量的细胞由于裂解液容易和细胞充分接触，相对比较容易裂解充分。充分裂解后，10,000-14,000×g在4ºC离心3-5分钟，取上清，进行蛋白浓度测定后即可进行后续的免疫沉淀和免疫共沉淀等。注：裂解后会出现少量不溶性物质，主要为基因组DNA等，离心后会产生沉淀物。 对于细菌或酵母样品的裂解和准备：对于1ml菌液或酵母液，离心去上清，用PBS洗涤2次，然后吸净残留的液体。轻轻vortex或者弹击管底以把细菌或酵母尽量分散开。加入100-200μl含抑制剂裂解液，轻轻vortex或者弹击管底以混匀，冰上裂解2-10min。如果希望获得更好的裂解效果，细菌和酵母可以分别使用溶菌酶(lysozyme)和破壁酶(lyticase)消化，然后再使用含抑制剂裂解液进行裂解。充分裂解后，10,000-14,000×g在4ºC离心3-5分钟，取上清，进行蛋白浓度测定后即可进行后续的免疫沉淀和免疫共沉淀等。注：裂解后很可能会出现少量不溶性物质，主要为基因组DNA等，离心后会产生沉淀物。对于组织样品的裂解和准备：把组织剪切成细小的碎片，按照每20mg组织加入约100-200μL裂解液的比例加入裂解液，然后用玻璃匀浆器或其它匀浆设备进行匀浆。充分匀浆可以确保组织被完全裂解。裂解后4ºC 12000g离心5分钟，取上清，进行蛋白浓度测定后即可进行后续的免疫沉淀和免疫共沉淀等。注：裂解后很可能会出现少量不溶性物质，主要为基因组DNA等，离心后会产生沉淀物。2. 免疫复合物的制备：a. 将 2- 10 μg亲和纯化的抗体（可用1XTBS进行稀释）与预处理的细胞裂解液在微量离心管中混合。每个IP反应总蛋白建议量是500 – 1000 μg，可使用BCA蛋白定量试剂盒测定。b. 用 IP 裂解液稀释细胞裂解液混合物至300 – 600 μL。c. 置于翻转混合仪上4℃孵育1小时至过夜，以形成免疫复合物。注：样品用量和孵育时间取决于每个特定的抗体-抗原体系，并且可能需要优化实验方案以使产量最大化。以上方案是针对2-10 μg亲和纯化的抗体，且可以根据需要按比例放大。3. Protein G琼脂糖磁珠预处理：a. 轻轻重悬Protein G Magnetic Beads，尽量形成均匀的悬浊液，取20μl悬浊液至一洁净离心管中加入预冷的1X TBS至最终体积为约0.5mL-1mL。b.置于磁力架上分离10秒，去除上清。小心去除上清，不要吸到磁珠。重复上述步骤两次 。4. 捕获免疫复合物：a. 结合：将抗原-抗体复合物 加入预处理后的Protein G Magnetic Beads中，置于翻转混合仪上4℃孵育1~4 h。b. 洗涤： 置于磁力架上分离10秒，去除上清。小心去除上清，不要吸到磁珠。重复上述步骤两次 。c. 洗脱： 本试剂盒提供以下两种洗脱方案，操作者可根据后期检测的需要选择不同的洗脱方法。。变性洗脱适用于 Western blot 分析。非变性洗脱被中和后，适用于酶法或功能测定。变 性 洗 脱：此方法洗脱的样品适用于SDS-PAGE检测。向洗涤后的含抗原-抗体-复合物的Protein G Magnetic Beads中加入20 µL 1XSDS-PAGE 上样缓冲液（可用5X上样缓冲液进行稀释）混合均匀，100℃加热10 min。待冷却后，置于磁力架上分离10秒，。收集上清，进行SDS-PAGE检测。非变 性 洗 脱：此方法洗脱的样品保持原有的生物活性，可用于后期功能分析。向洗涤后的含抗原-抗体-复合物的Protein G Magnetic Beads中加入50 µL 洗脱缓冲液 ，混匀后置于旋转混合仪上，室温孵育5分钟，孵育完毕后，置于磁力架上分离10秒，将上清转移到新的离心管中，并立刻加入5μL Neutralization Buffer ，适当混匀，将洗脱产物pH调节至中性，用于后期功能分析。注：a. 为了获得最大的洗脱效率，可重复该洗脱步骤若干次，并将相同样品合并。b. 洗脱并中和的蛋白及其复合物置于4ºC待用或者-20ºC或-80ºC长期保存。c. 酸性洗脱法虽然高效，但仍可能低于变性洗脱法。d. 由于目的蛋白的差异可能对酸性洗脱法的洗脱效率有一定的影响，如果对洗脱效率的要求比较高，可对洗脱液的pH进行一定的调整，相应的中和液的pH值或量也要进行一定的调整，具体需要自行优化相关实验条件。也可以考虑采用效率可能更高的多肽竞争洗脱法或效率预期最高的变性洗脱法，后者的缺点是在变性条件下进行洗脱，可能会对后续对于蛋白活性有要求的实验产生影响。